在植物樣品同位素（如δ13C、δ1?N、δ2H、δ1?O）測定中，烘干溫度的選擇至關重要，核心目標是徹底去除水分的同時，最大限度避免由溫度誘導的化學變化或揮發性組分損失導致的分餾。推薦溫度范圍是50°C至70°C，并優先選擇盡可能低的溫度（如55°C-60°C），且強烈建議使用冷凍干燥（凍干）作為首選方法。

避免分餾的原理與溫度選擇依據：

1. 水分去除與分餾風險： 水分子（H?O）中的氫（H）和氧（O）同位素本身就存在分餾效應。高溫烘干（>80°C）會加速水分蒸發，可能導致殘留水或樣品中易交換氫/氧的同位素組成發生輕微但顯著的改變（分餾），特別是對δ2H和δ1?O分析影響最大。低溫烘干或凍干能更“溫和”地去除水分，減少蒸發過程中的分餾。

2. 揮發性有機物損失與分餾： 植物樣品含有多種揮發性有機化合物（VOCs）、有機酸、萜烯類等。高溫（尤其>70°C）會顯著增加這些物質的揮發損失。這些化合物通常具有與整體植物組織不同的同位素組成（如較輕的δ13C）。它們的優先損失會改變殘留固體的同位素比值，導致δ13C（甚至δ1?N）結果偏離真實值。低溫烘干或凍干能有效保留這些揮發性組分。

3. 熱降解與化學變化： 過高的溫度（>80°C）可能導致樣品中某些有機組分發生熱降解、美拉德反應（糖胺反應）或氧化。這些化學反應本身就可能伴隨同位素分餾，改變殘留物中C、N、H、O元素的同位素組成。低溫處理能最大程度避免此類非生物化學反應。

4. 樣品形態與均一性： 高溫可能導致樣品表面硬化結殼，阻礙內部水分均勻蒸發，造成樣品內部水分分布和潛在分餾不均。低溫烘干或凍干有助于維持樣品結構，促進水分均勻去除。

具體建議與最佳實踐：

* 首選方法：冷凍干燥（凍干）：

* 最優選擇： 在真空和低溫（通常-50°C以下）下，使樣品中的水分直接從冰升華為水蒸氣。這完全避免了液相蒸發引起的同位素分餾，最大限度地保留了揮發性有機物和樣品的原始化學狀態。

* 適用性： 是所有同位素分析（尤其是δ2H、δ1?O）最可靠、推薦度最高的干燥方法。對δ13C和δ1?N分析也是最佳選擇。

* 次選方法：恒溫鼓風干燥（如必須使用）：

* 溫度范圍：嚴格控制在50°C - 70°C。 強烈建議使用該范圍的下限，如55°C或60°C。

* 避免高溫：絕對避免使用80°C或更高溫度。 即使是70°C也應謹慎，僅在對δ13C/δ1?N分析且樣品不含高揮發物時考慮，并需驗證。

* 時間控制： 烘干至恒重（通常24-72小時），避免過度加熱。應定期稱重以確定干燥終點。

* 空氣流通： 確保烘箱內空氣流通良好，促進均勻干燥。

* 通用注意事項：

* 樣品粉碎時機： 應在干燥后再進行研磨粉碎。濕磨可能引入水分變化或分餾，且難磨均勻。

* 樣品均一性： 確保樣品（尤其是混合樣或不同部位）在干燥前充分混勻（如液氮研磨），或在干燥后粉碎并充分混勻。

* 記錄與報告： 詳細記錄干燥方法（凍干/烘干）、具體溫度、持續時間。這對數據解讀和同行比較至關重要。

* 方法驗證： 對于關鍵研究或新樣品類型，建議進行方法學驗證：比較凍干與不同低溫烘干對目標同位素比值的影響，選擇無明顯差異且穩定的方法。

總結：

為精確測定植物樣品同位素組成并避免分餾，冷凍干燥是首選且最可靠的方法。若條件限制必須使用烘箱，務必嚴格控制溫度在50°C-70°C（優選55°C-60°C），并絕對避免超過70°C。高溫烘干極易導致水分蒸發分餾（影響H、O）和揮發性有機物損失/化學變化（影響C、N、H、O），從而引入顯著誤差。始終將溫和、非破壞性的干燥方式作為核心原則，并在研究報告中清晰注明干燥條件。